产品描述

miRNA  miR-DownTM  antagomir 及miR-UPTM agomir 产品

Agomir是经过特殊标记和化学修饰的双链小RNA,通过模拟内源性的miRNA来调节靶基因的生物学功能。吉玛公司依靠领先的核酸化学合成技术，推出miRNA mimics、inhibitor的升级产品,miRNA agomir和antagomir.为您提供更经济的实验方案，更轻松的实验操作，更完美的实验结果。
 
antagomir 和agomir 具有如下优点： 

1、与普通miRNA inhibitor和mimics相比，antagomir 和agomir与细胞膜亲和力更高，细胞转染实验转染试剂用量显著减少。

2、特别适合动物体内干扰实验.并且在体内实验中具有更高的稳定性和抑制效果，可以采用全身注射或局部注射等多种方式给药，操作简便。

3、可富集于靶细胞，实现高效的特异性稳定干扰

4、抑制持续时间长,至少达到一周时间,干扰效果最长可持续5-6周。

antagomir 及agomir 化学修饰结构

antogimir 3’端进行胆固醇修饰，5’端两个硫代骨架修饰，3’端四个硫代骨架修饰，全链甲氧基修饰。
agomir在反义链进行修饰，3’端进行胆固醇修饰，5’端两个硫代骨架修饰，3’端四个硫代骨架修饰全链甲氧基修饰

订购须知

1. agomir保证序列正确、质量和纯度达标，达到共同保证要求，转染效率80%保证一种qPCR方法能检测到miRNA上调显著性差异（与对照比较），只接受一次无效投诉，需款到后发送重合产品，如果重新合成后再次无效，则不再接受投诉处理。由于靶基因调控因素较多，不保证其调控相关基因变化。

2. antagomir保证序列正确、质量和纯度达标，达到共同保证要求，但鉴于miRNA抑制剂结合后不一定降解miRNA，且没有变更序列碱基可能，故不保证qPCR方法能检测到miRNA下调显著性差异（与对照比较）。

功能介绍与实验实例

使用方法

A．siRNA转染的方法

哺乳动物转染的常见方法有：磷酸钙共沉淀、电穿孔法、DEAE-葡聚糖和polybrene、机械法（例如,显微注射和基因枪）、阳离子脂质体试剂，其中阳离子脂质体试剂转染法是目前最常用的转染方法。

应用脂质体型转染试剂进行转染需要注重的几个方面：转染试剂的用量、siRNA的用量、转染时的细胞密度、转染时的操作顺序、细胞与转染试剂/siRNA复合物的温浴的时间


B．Lipofectamin2000 转染试剂

选择最适合的转染试剂和转染条件，往往取决于不同的哺乳动物细胞类型和不同的核酸分子。Lipofectamin2000适用于核酸的体内和体外操作，可应用于DNA、RNA、反义寡核苷酸、siRNA的转染，也可应

用于DNA/siRNA的共转染操作；是一种新型的高效siRNA转染试剂。


Lipofectamin2000的应用领域：

1、原代培养细胞和转化细胞株的基因转染
2、siRNA高通量转染试验
3、DNA转染；DNA和siRNA的共转染
4、核酸（siRNA、DNA、RNA）的体内导入试验
5、贴壁细胞和悬浮细胞转染


Lipofectamin2000 的特点： 

1、不必更换培养基，操作简便易行，可在半小时内完成操作
2、在含血清培养基中也能表现高转染效率
3、细胞毒性低；适用细胞广泛
4、即用型试剂，可在含有抗生素的完全培养基中转染
5、基于脂质的转染试剂，确保没有RNAse活性
6、可介导siRNA高转染细胞及体内siRNA的高效导入


C. Lipofectamin2000适用的细胞类型

Lipofectamin2000转染试剂可广泛应用于多种细胞系的DNA和siRNA转染如：HeLa(人颈部癌细胞)、MCF-7(人乳房癌细胞)、Hep3B(人肝细胞癌细胞)、COS-7(猴肾细胞)、Neuro-2a(鼠神经母细胞瘤细胞)、NIKS(人角质化细胞)、B16(鼠黑素瘤细胞)、DLD-1(人结肠癌细胞)、NIH/3T3(鼠胚胎成纤维细胞)、HT-29(人结肠腺癌细胞)、A549(人肺癌细胞)、CHO-k1(仓鼠卵巢细胞)和293(腺病毒5 DNA转化的人胚胎肾细胞),SVRbag4细胞等。


D．转染前细胞培养

在细胞板上培养细胞时，应使细胞汇合在24小时内达到70-90%。


E．合适的lipofectamin2000用量

合适的siRNA(DNA)：lipofetamin2000比例对核酸的高效转染有重要影响；我们推荐的DNA：lipofetamin2000为1：0.5—1：5（ug:ul），siRNA：lipofectamin2000为1：0.01-1：0.1（pmol：ul）一般情况下，此范围内都可获得高的转染效率。



F．贴壁细胞转染程序

选用生理状态良好的细胞对提高转染效率很重要。siRNA(DNA)和lipofectamin的用量和两者的比例可在推荐范围内适当调整。

1、转染前一天，4-5´104细胞接种在24孔板上， 0.5mL含FBS和抗生素的DMEM（或Opti-MEM，其他培养基）细胞培养基。
2、选择用于初期接种的细胞数量，应能在24小时内使细胞汇合达到70-90%。
3、在50μl的DMEM（或Opti-MEM，或其他无血清培养基）无血清培养基加入20pmol siRNA(或0.8μg DNA)，柔和混匀；
4、混匀lipofectamin试剂，用50μl无血清的DMEM或Opti-MEM，或其他无血清培养基）稀释1μl lipofectamin试剂（DNA转染时，则加入2μllipofectamin试剂），轻轻混匀，室温放置5分钟；

5、将稀释好的siRNA和RNAi-Mate试剂混合；轻柔混匀，室温放置20分钟,以便形成siRNA/lipofectamin（或DNA/lipofectamin）复合物。
6、将100μl siRNA/lipofectamin（或DNA/lipofectamin）复合物加到含有细胞和培养基的培养板的孔中，来回轻柔摇晃细胞培养板板。
7、 细胞在CO2培养箱中37℃温育24h-48h后，进行转染后的其它检测步骤。如果细胞株比较敏感，孵育4-6小时后，除去复合物，更换培养基。  


G．悬浮细胞转染程序

1、转染的当天，收集细胞离心，用含FBS的培养基重悬。
2、在50μl的DMEM（或Opti-MEM，或其他无血清培养基）无血清的培养基加入20pmol siRNA(或0.8μg DNA)，柔和混匀；
3、混匀lipofectamin试剂，用50μl无血清的DMEM或Opti-MEM，或其他无血清培养基）稀释1μl lipofectamin试剂（DNA转染时，则加入2μl lipofectamin试剂），轻轻混匀，室温放置5分钟；
4、将稀释好的siRNA和lipofectamin试剂混合；轻柔混匀，室温放置20分钟,以便形成siRNA/lipofectamin（或DNA/lipofectamin）复合物。
5、再加入400μL细胞悬浮液（细胞数量决定于细胞类型和转染后分析测试的时间）。
6、细胞在CO2培养箱中37℃温育24h-48h后，进行转染后的其它检测步骤。如果细胞株比较敏感，孵育4-6小时后，除去复合物，更换培养基。  



H．DNA和siRNA共转染细胞

1、在转染的前一天，4-5´104细胞接种在24孔板上，0.5 mL含FBS和抗生素的细胞培养基。
2、选择用于初期接种的细胞密度，应能在24小时内使细胞汇合达到70-90%。
3、在100μL的无血清的培养基中稀释20pmol siRNA和0.2μg DNA，加入2μl lipofectamin试剂，充分混合，放置20分钟,以便形成siRNA/ DNA/lipofectamin复合物。
4、将siRNA/ DNA/lipofectamin复合物加入培养基中，轻轻混匀。
5、细胞在37℃温育24h-48h后，进行转染后的其它步骤。


I．siRNA体内导入方法

1、适量的siRNA或DNA溶于不含RNA酶的无菌水中，轻轻混匀，因为注射液体积有限，建议采用高浓度的siRNA或DNA，一般DNA为2μg /μL、siRNA为10μg /μL。
2、取适量的DNA、siRNA或siRNA\DNA复合物与lipofectamin混合。例如，在1#管中加入0.5μL的DNA（1μg）和0.5μL的siRNA（5μg），在2#管中加入0.55μL的lipofectamin（24μg）和0.45μL不含RNA酶的无菌水中，将1#管中的溶液加入2#管中，在室温下温育30分钟，以形成siRNA/DNA-lipofectamin复合物。
3、制备的siRNA/DNA-lipofectamine复合物可用于体内导入siRNA、DNA或siRNA\DNA。

产品说明书

相关文献

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9.Wang K, Long B, Zhou L Y, et al. CARL lncRNA inhibits anoxia-induced mitochondrial fission and apoptosis in cardiomyocytes by impairing miR-539-dependent PHB2 downregulation. Nature communications. 2014 Apr 7; 5: 3596.
10.Wang K, Long B, Zhou L Y, et al. CARL lncRNA inhibits anoxia-induced mitochondrial fission and apoptosis in cardiomyocytes by impairing miR-539-dependent PHB2 downregulation. Nature communications. 2014 Apr 7; 5: 3596.

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1. RNA干扰研究工具
2. MicroRNA研究工具 

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