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慢病毒包装服务
吉玛公司倾情推出慢病毒系列产品,滴度最高可达10^10TU/ml,为广大科研工作者在新的一年里提供有力的干扰手段,解决转染效率低,抑制效率不高的难题。我们的慢病毒包装快速(3-4周),性价比高,定制1ml滴度为10^9TU的病毒液只需要3880元/ml。
吉玛公司可提供多种滴度的慢病毒液
滴度 | 规格 | 报价 | 如果由于表达基因影响正常细胞状态,造成病毒滴度未达到要求,则按照实际包装病毒滴度收费,低于10^8TU/ml,则免费包装一次,并以实际最高包装滴度发货。 |
1*10^8TU/ml | 1ml | ¥2880 | |
1*10^9TU/ml | 1ml | ¥3880 |
目前,我公司慢病毒载体是以国际通用的第三代载体系统为基础,通过一定改建,构成四质粒体系。其中,转移载体(transfer vector)包含转移目的基因的慢病毒骨架及其包装产生相应基因组RNA的所有顺式作用元件,并且可以单一或多重组合的稳定或条件诱导性表达转移基因或shRNA;另外,通过三个辅助质粒,提供病毒包装所需的反式作用因子,同时采用“自我灭活”修饰,阻止子代病毒自我复制和转移,从而确保产生的慢病毒具备良好的生物安全性。
生物安全
1、安全性
(1)删除了全部HIV-1的编码基因,在介导目的基因的表达时,没有任何HIV-1蛋白的表达;
(2)对5’和3’ LTR分别进行了删除改造,5’LTR缺失U3,换上RSV enhancer/promoter,使载体的复制不再依赖Tat;3’LTR删除U3,使其不再具有启动/增强活性,成为自灭活(self-inactivating, SIN)载体;
(3)病毒包装必需的3个蛋白Gag/Pol、Rev、VSV-G(代替HIV-1的Env)分别独立放置在3个质粒上(pGag/Pol、pRev、pVSV-G),且互相之间没有任何同源序列,大大降低了复制型慢病毒(RCL)的产生几率;
(4)与MuLV等逆转录病毒载体相比,慢病毒载体的整合更偏向于宿主细胞基因组的基因表达活跃区,激活沉默的原癌基因的几率可能比逆转录病毒载体低;
(5)慢病毒载体未发现有致肿瘤活性,全世界有4千万人感染了HIV-1,发生的整合事件不计其数,但未出现一起致瘤事件,而MuLV等逆转录病毒载体有致瘤活性;
(6)慢病毒的LTR的转录激活能力低于逆转录病毒,激活原癌基因能力也相对较低。
2、实验室安全措施
慢病毒载体已经被全世界许多实验室应用,没有出现过任何意外,但仍具有潜在的产生复制型慢病毒(RCL)和致癌的风险,操作者在实验中仍需要保持高度警惕。所有操作均应尽量在BSL2级生物安全柜中进行,并佩戴一次性口罩和手套,尤其要避免病毒接触口、眼、鼻、耳、伤口等身体开放性区域,避免䚧生溶胶,tip头一定要选择带有滤芯的。必须高度注意被污染的尖锐物品,包括针头、注射器、载玻片、移液管、毛细玻璃吸管和解剖刀。每次实验后,立即清理所有接触过病毒的器具,均应高压消毒再进行下一步处理。显微镜台、生物安全柜台面等使用后,用70%乙醇擦拭。意外洒落的含病毒的液体,用卫生纸吸干后,用0.6%次氯酸钠溶液浸泡被污染处1h。装盛慢病毒载体的实验用品,要单独放置,标示清楚,并标注“危险品”字样。尽量使用培养瓶,使用培养板来感染病毒,要防止意外洒落。对共用实验室的人员进行慢病毒安全培训或提示。
成功案例
病毒滴度测定:
吉玛基因实验室细胞推荐Lentivirus感染参数:
细胞系慢病毒感染参数 | |||||
名称 | ATCC No. | 细胞类型及来源 | 达到80%感染所需MOI | ||
293T | CRL-11268 | 人胚胎肾细胞 | 1 | ||
95D | —— | 人高转移肺腺癌细胞 | 3 | ||
CNE-1 | —— | 人鼻咽癌细胞(高分化) | 50 | ||
hADSC | —— | 人脂肪肝细胞 | 100 | ||
HEC-1B | HTB-113 | 人子宫内膜癌细胞 | 5 | ||
Hep-2 | —— | 人喉表皮样癌细胞 | 20 | ||
hFOB1.19 | —— | 永生化人成骨细胞 | 2 | ||
HL-60 | CCL-240 | 人原髓细胞白血病细胞 | 50 | ||
HLE-B3 | —— | 人晶状体上皮细胞 | 1 | ||
hMSC | —— | 人骨髓间充质干细胞 | 50 | ||
hSMC | —— | 人平滑肌细胞 | 50 | ||
HUVEC | —— | 人脐静脉内皮细胞 | 5 | ||
Jurkat | TIB-152 | 人白血病细胞 | 100 | ||
MCF-7 | HTB-22 | 人乳腺腺癌细胞 | 5 | ||
MDA-MB-231 | HTB-26 | 人乳腺癌细胞 | 10 | ||
SaoS-2 | —— | 人成骨肉瘤细胞 | 20 | ||
SGC-7901 | —— | 人胃癌细胞 | 5 | ||
SHG-44 | —— | 人胶质瘤细胞 | 10 | ||
SKOV-3 | HTB-77 | 人卵巢癌细胞 | 5 | ||
SMMC-7721 | —— | 人肝癌细胞 | 1 | ||
SPC-A-1 | —— | 人肺腺癌细胞 | 10 | ||
THP-1 | TIB-202 | 人单核细胞 | 100 | ||
U251 | —— | 人胶质瘤细胞 | 1 | ||
U-20S | HTB-96 | 人骨癌细胞 | 5 | ||
U937 | CRL-1593.2 | 人组织细胞淋巴瘤细胞 | 100 | ||
HSC-T6 | —— | 永生化大鼠肝星型细胞 | 3 | ||
PC-12 | CRL-1721 | 大鼠肾脏嗜铬细胞 | 100 | ||
H9c2(2-1) | CRL-1446 | 大鼠心肌细胞 | 1 | ||
KM3 | —— | 大鼠骨髓癌细胞(B淋巴细胞) | 50 |
原代培养细胞慢病毒感染参数 | |||||
细胞名称 | 种属 | 细胞类型及来源 | 达到80%感染所需MOI | ||
甲状旁腺原代细胞 | 人 | 甲状旁腺组织 | 50 | ||
胚椎间骨髓核细胞 | 人 | 胚胎组织 | 5 | ||
血管平滑肌细胞 | 大鼠 | 血管平滑肌 | >100 | ||
胶质细胞 | 大鼠 | 脑组织0 | 5 |
培养器皿 | 底面积(cm2) | 加培养液量(mL) | 可获细胞量 |
96孔培养板 | 0.32 | 0.1 | 0.5-2.0×10^4 |
48孔培养板 | 0.8 | 0.2 | 0.2-1×10^5 |
24孔培养板 | 1.9 | 1.0 | 0.5-2×10^5 |
12孔培养板 | 3.8 | 2.0 | 1-4×10^5 |
6孔培养板 | 9.6 | 2.5 | 3-8×10^5 |
3.5cm培养皿 | 9.6 | 3.0 | 3-8×10^5 |
6cm培养皿 | 28 | 5.0 | 1-3×10^6 |
9cm培养皿 | 49 | 10.0 | 2-5×10^6 |
10cm培养皿 | 55 | 10.0 | 3-8×10^6 |
25cm塑料培养瓶 | 25 | 5.0 | 5×10^6 |
75cm塑料培养瓶 | 75 | 15-30 | 2×10^7 |
25cm玻璃培养瓶 | 19 | 4.0 | 3×10^6 |
100cm玻璃培养瓶 | 37.5 | 10.0 | 6×10^6 |
250cm玻璃培养瓶 | 78 | 15.0 | 2×10^7 |
2500cm旋转培养瓶 | 700 | 100-250 | 2.5×10^8 |
Lentivirus在细胞水平使用
GenePharma提供的重组Lentivirus颗粒是以VSV-G膜蛋白包裹,从而大大增加了病毒感染谱,但对不同组织细胞亲嗜性仍有差别,因此,有必要在使用Lentivirus颗粒之前请查阅有关文献,了解Lentivirus对靶细胞的亲嗜性、感染复数(MOI值)及体内(in vivo)注射所需的病毒量,若无相应文献支持,则需要检测病毒对靶细胞的亲嗜性。
1、病毒滴度复核(有限稀释法测定)
(1)滴度检测前一天,对293T细胞传代,96孔板每个孔加入约5×10^4cells/ml,体积50~100ul;
(2)第二天,准备3~5个无菌EP管,在每个管中加入90ul的新鲜完全培养基(高糖DMEM+10%FBS);
(3)取待测定的病毒原液10ul加入到第一个管中,轻轻混匀后,取10ul加入到第二个管中,然后依次操作直到最后一管;
(4)选取所需的细胞孔,吸弃90ul培养液,然后将稀释好的病毒液,从低浓度到高浓度依次加入,放入37℃ 5% CO2培养箱中培养;
(5)48小时后,每孔加入100ul新鲜培养液,小心操作,不要吹起细胞;
(6)3~4天后,观察荧光表达情况,正常情况下,荧光细胞数随稀释倍数增加而相应减少,计数最后二个含有荧光细胞的孔中的荧光细胞个数,将得到的数值除以各自相应的稀释倍数,即可计算出病毒原液的滴度值(通常以倒数第二个孔中的读数值更为准确)。
注释:
(1)病毒滴度测定结果还依赖于本身实验系统,如293T细胞代数、细胞状态、荧光显微镜品质、相关实验试剂及实验人员操作技能,因此不同实验室测得滴度数值会有所差异(1~5倍),但基本不会影响正常实验流程;
(2)病毒滴度(BT = TU/ml, transducing units)计算公式: TU/μl = (P × N / 100 × V) ×1/DF, P = % GFP+ cells,N = 转染时的细胞数V =每孔加入病毒稀释液体积(μl),DF =稀释因子(dilution factor)= 1 (undiluted)、10–1 (diluted 1/10)、 10–2 (diluted 1/100)。
常用慢病毒滴度检测方法比较
名称 | 原理 | 单位 | 特点 | 优缺点 | 与GFP荧光法相比 |
p24核心蛋白定量法 | ELISA Kit 1 |
ng p24/ml LP/ml TU/ml(估计) |
物理(颗粒)滴度 | 经典方法,简单、重复性好 | 高估102~103倍 |
RNA基因组定量法 | RT-qPCR |
RNA/ml、 Vg/ml TU/ml(估计) |
物理(核酸)滴度 | 精度高,但对仪器和操作要求高 | 高估102~104倍 |
GFP荧光计数法 | FACS(流式细胞计数) | TU/ml | 感染滴度 | 经典方法,简单、重复性好 | - |
抗性克隆计数法 | 细胞克隆计数 | TU/ml | 感染滴度 | 克隆形成需约2周 | 低估5~10倍 |
Dot-blot法 | RNA dot-blot | RNA/ml | 物理(核酸)滴度 | 简单,但属于半定量 | |
DNA 定量法 | 感染细胞后定量载体DNA | TU/ml | 感染滴度 | 最接近真实感染滴度,但不同细胞感染效率不同 |
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目录分类 本商品目录中的产品介绍按以下内容分类:
1. RNA干扰研究工具
2. MicroRNA研究工具
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(2)当日17:00到次日17:00前,按该项产品金额的50%收取。
(3)次日17:00后,按该项产品金额的100%收取。